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서 론
알레르기(allergy)란 자기면역질환의 하나로 생체 내에서 이물질이 방어기능을 가지기 위하여 항원에 대한 항체가 생성되는데, 다시 항원이 체내에 들어왔을 때 항원과 항체가 복합체를 형성하여 사람의 면역시스템이 과민하게 반응하여 병적 현상을 유발하는 것을 말한다(Leung 등, 2004). 음식 알레르기(food allergy)란 일부 단백질에 반응하여 무해한 특징 음식에 대해 우리 몸의 면역체계가 체내 유해한 것으로 판단하여 이들 음식을 섭취했을 때 부적절하게 과민반응을 나타내는 것이다. 식품 알레르기는 아토피피부염뿐만 아니라, 천식, 두드러기, 아나필락시스, 소화기 증상 등 다양한 알레르기 증상을 유발할 수 있다(Sicherer와 Sampson, 2018).
비만세포(mast cell)는 고친화성(high-affinity) immunoglobulin (Ig) E 수용체인 FcεRI를 가지고 있고 IgE는 FcεRI 수용체에 결합하여 IgE 매개 알레르기 반응을 개시한다. FcεRI 수용체에 IgE와 항원이 복합체가 결합하면 β-hexosaminidase와 histamine 등이 방출되고, 여러 가지 사이토카인[interleukin-4 (IL-4), IL-13, rat tumor necrosis factor(TNF-α) 등]과 염증매개체(inflammatory mediators)를 방출하여 알레르기 질환 발병에 중요한 역할을 한다(Chung 등, 2020; Sicherer와 Sampson, 2018).
동물성 식품에 포함된 알레르기 유발 단백질 중 대표적인 단백질이 트로포미오신(tropomyosin: 근육조직에 포함된 단백질)이다. 조개류는 알레르기를 유발하는 식품으로 알려져 있고, 조개류에 함유된 물질이 IgE 매개 반응으로 증상이 나타날 수 있는 알레르겐(allergen) 중 하나가 트로포미오신(tropomyosin)이며(Lopata 등, 2016), 이것은 꼬막의 주요 알레르겐이기도 하다(Fujinoki 등, 2006). 트로포미오신(tropomyosin)은 열에 안전한 근육단백질로서 열을 가해도 없어지지 않으며, 트로포미오신은 고도로 보존된 IgE 결합 에피토프(IgE binding epitopes)를 보유하고 있어 트로포미오신이 체내에 들어오면 면역세포가 과민하게 반응해 알레르기 반응이 나타난다(Lopata 등, 2016). 이들 물질이 함유한 음식물을 만지기만 해도 반응이 나타날 수 있다. 검정콩 껍질 유래 안토시아닌, 다양한 플라보노이드(flavonoids), 키토산 등 천연소재들은 항알레르기 효과가 알려져 있고(Chung 등, 2011; Chung 등 2012; Chung 등, 2013; Chung 등, 2020), 이들 천연소재를 활용하여 제품화에 사용될 수 있는 알레르기 저감화 꼬막 함유 식품소재 개발이 가능할 것으로 예상된다.
본 연구에서는 알레르겐으로 작용하는 꼬막 단백질의 불활성화 하는 방법 및 다양한 천연소재들을 활용하여 꼬막의 알레르기를 저감화한 식품소재 개발에 대해 알아보았다. 천연소재 함유 혼합물을 이용한 알레르기가 저감화된 초절임 꼬막을 활용하여 꼬막 함유 혼합분말 추출물 처리가 항원(IgE)과 항체(DNP-HSA) 복합체에 의해 유도된 알레르기 유발 호염기(basophil) RBL-2H3 비만세포에서 항알레르기 효과 및 IgE만 처리한 RBL-2H3 세포 모델에서 알레르겐으로 작용하는지를 β-hexosaminidase 및 cytokines(IL-4, IL-13, TNF-α) 분비능으로 알아보았다.
재료 및 방법
양파(onion), 사과(apple), 오이(cucumber), 생강(ginger) 및 브로콜리(broccoli)는 2020년 7월 광주광역시 남구 대형 마트에서 국내산으로 구매하여 양파는 껍질을 제거하고, 다른 재료는 껍질을 제거하지 않은 채 흐르는 물에 깨끗이 씻은 후 물기를 제거하고, 50°C에서 건조 및 분쇄한 분말을 추출물 제조에 사용하였다.
양파, 사과, 오이, 생강 및 브로콜리의 건조한 분말을 2:2:1:0.5:1 비율로 개발하여 20배의 증류수를 넣은 후 60°C와 60 rpm으로 맞추어진 shaking incubator(JSS1-100C, JSR, Seoul, Korea)에서 24시간 추출하여 커피 여과지로 여과한 추출물을 혼합물이라 하였다.
자숙 꼬막은 ㈜벌교꼬막으로부터 제공받았다. 사과식초(Ottogi, Anyang), 백설 5 g 스틱 설탕(Cheiljedang, Seoul) 및 소금(Hanju, Ulsan)은 광주광역시 남구 대형 마트에서 구매하여 사용하였다. 꼬막 함유 혼합분말에 사용된 꼬막은 알레르기 저감화 효과를 가진 초절임 꼬막을 사용하였다. 즉, 초절임 꼬막 개발과정은 소독한 용기에 자숙 꼬막 80 g을 넣었다. 그런 다음 물 500 mL에 소금 20 g과 설탕 20 g을 녹여 가열한 용액 중 130 mL를 더하였다. 그리고 혼합물 30 mL를 넣은 후 냉장고에서 2시간 방치하였다. 2시간 후 최종적으로 식초 50 mL를 더하여 냉장고에 18시간 더 두었다. 그 후 1차 초절임액을 HPLC 분석을 위해 모아 두고 2차 새로운 초절임 액을 첨가하였다. 2차 초절임 액은 물 70 mL에 소금 5 g, 설탕 5 g을 넣어 완전히 녹인 후 혼합물 30 mL를 추가하여 끓으면 바로 불을 끄고 2분간 방치 후 뜨거운 상태로 멸균된 유리 용기에 더했다. 식초 50 mL를 추가한 후 1일간 냉장고에 보관 후 실험에 사용하였고, 이 초절임 꼬막에 사용된 초절임액을 2차 초절임액이라고 하였다. 물을 혼합물 대신에 넣어 같은 방법으로 제조한 초절액 꼬막의 1차와 2차 초절임액을 모아 대조군 초절임액으로 사용하였다.
1차 초절임액과 2차 초절임액은 합하여 Whatman filter paper No. 2(Whatman International Ltd., Springfield Mill, Kent, UK)를 사용하여 여과하였고, 감압농축기(R-100, BüCHI, Flawil, Switzerland)를 사용하여 용매를 제거한 후 동결건조기(Clean vac 8, Hanil, Incheon, Korea)로 동결건조한 분말을 플라보노이드 HPLC 분석용 시료로 사용하였다.
동결건조 분말을 40 mg을 취한 후 100% MeOH에 용해하여 40 mg/mL로 조제한 후(4,000 rpm) 초음파 진탕기로 20분간 녹인 후 0.45 μm PVDF 멤브레인 필터로 여과하여 시험용액으로 사용하였다. 분석에 사용된 HPLC system은 binary pump(Waters 1525, Waters Inc., Milford, MA, USA)와 UV-Visible detector(Waters 2489, Waters Inc.)가 장착된 것으로 분석하였다. 컬럼은 YMC-Pack Pro C18 column(25 cm×4.6 mm, 5 μm; Waters Inc.)을 사용하여 분리를 진행하였다. 이동상은 0.5% acetic acid를 함유한 3차 증류수와 acetonitrile을 gradient 조건으로 두 용매 비율을 조정하면서 분석하였다. 시료는 20 μL를 주입하였고, 유속은 1.0 mL/min으로 설정하였으며, 모든 피크는 360 nm의 파장을 이용하여 검출하였다. 이동상을 사용하기 전에 0.45 μm 필터(Millipore, Milford, MA, USA)를 통해 여과하고, 진공 하에 탈기하여 사용하였다.
혼합분말 개발을 위해 사용한 단호박, 브로콜리, 양파, 시금치, 비트, 당근, 사과, 고구마, 귀리, 보리, 현미, 찰흑미, 찹쌀, 검은콩 그리고 렌탈콩은 2020년 7-10월 광주광역시 남구 대형 마트에서 국내산으로 구매하였고, 월계수 잎(Gomaps, Sydney, Australia)은 순천 식자재 마트에서 구매하였다.
냉장고에 보관된 개발한 초절임 꼬막을 체로 건져 초절임액을 완전히 제거한 후 55°C에서 건조하였다. 과채류로 단호박, 브로콜리, 양파, 시금치, 비트, 당근 그리고 사과를 사용하였고, 서류는 고구마를 사용하였다. 모두 씻어 물기를 제거하였고, 브로콜리(15×60×5-20 mm), 양파(45×70×5 mm), 비트(50×70×5 mm), 당근(50×50×5 mm)은 잘라 5분간, 단호박(50×60×5 mm)과 고구마(50×50×5 mm)는 잘라 10분간 찐 후 55°C에서 건조하였다. 사과(80×35×5 mm)는 씻어 물기를 제거한 후 잘라 둔 것을 55°C에서 건조하였다. 곡류인 귀리, 보리, 현미 그리고 찰흑미는 씻어 물기를 제거한 후 바람이 잘 통하는 실온에서 말린 후 귀리는 1분 30초간 그리고 다른 곡류는 2분간 볶았다. 검정콩과 렌탈콩은 씻어 물기를 제거한 후 하루 건조하였고, 검정콩은 6분간 그리고 렌틸콩은 1분 30초간 볶았다. 아몬드와 호박씨는 오븐에서 150°C, 8분간 구웠다. 월계수 잎은 건조한 것을 구매하였고, 분쇄 후 상기 양파 등과 같은 조건으로 물추출 후 여과, 농축 후 동결건조 분말을 사용하였다.
혼합분말 제조를 위해 모든 시료는 각각 분쇄기(RT-08; Rong Tsong Precision Technoloy Co., Taiwan)를 이용하여 분쇄한 후, 꼬막 분말(1%), 단호박 분말(5%), 브로콜리 분말(2%), 양파 분말(3%), 시금치 분말(2%), 비트 분말(1%), 당근 분말(1%), 사과 분말(1%), 고구마 분말(5%), 귀리 분말(3%), 보리 분말(3%), 현미 분말(3%), 찰흑미 분말(8%), 검은콩 분말(7%), 렌틸콩 분말(2%), 아몬드 분말(6%), 호박씨 분말(6%), 월계수 잎 물 추출물 동결건조 분말(1%) 그리고 말토덱스트린(39%)을 섞어 꼬막 함유 혼합분말(mixture powder containing ark shell, MP)을 개발하였다(Table 1). 다른 꼬막 함유 혼합분말의 식품 배합비는 Table 1과 같다.
Table 1의 배합비를 가진 MP, MP4 그리고 MP5를 각각 중량의 20배인 증류수를 넣은 후 60°C와 60 rpm으로 맞추어진 shaking incubator(JSSI-100C, JSR, Seoul, Korea)에서 24시간 추출하였다. 추출한 것은 원심분리 후 상층액을 감압농축기(R-100, BüCHI, Flawil, Switzerland)를 사용하여 추출 용매를 제거한 후 동결건조기(Clean vac 8, Hanil, Incheon, Korea)로 동결건조한 분말을 -20°C에서 보관하면서 세포실험에 사용하였다. MP, MP4 그리고 MP5 추출물들의 동결건조 분말을 각각 MPCAS, MPCAS4 그리고 MPCAS5라고 명명하였다.
RBL-2H3 세포(rat basophilic leukemia mast cells)은 한국세포주은행에서 구매하여 사용하였다. RBL-2H3 세포는 Dulbecco’s Modified Eagle Medium(DMEM, Welgene)에 10% fetal bovine serum(FBS), 1% penicillin/streptomycin을 첨가한 세포 배양액을 사용하여 37°C 습윤한 CO2 배양기(5% CO2/95% air)에서 배양하였다. 세포가 배양 접시의 80% 정도 차면 phosphate-buffered saline(PBS, pH 7.4)으로 세포의 단층을 씻어내고, trypsin-EDTA(×1)를 처리하여 계대 배양한 후 배지는 2일마다 교환하였다.
RBL-2H3 세포를 5×105 cells/well로 24-well plate에 분주하여 48시간 배양한 후 FBS가 함유되지 않은 serum-free medium(SFM)으로 배지를 교환하여 2시간 동안 배양하였다. 이후 250 ng/mL dinitropheny-Immunoglobulin E(DNP-IgE)가 포함된 배지로 교환하여 24시간 동안 배양하였다. 세포를 Siraganian buffer 1(119 mM NaCl, 5 mM KCl, 0.4 mM MgCl2, 25 mM PIPES, pH 7.2)로 세척 후 Siraganian buffer 2(119 mM NaCl, 5 mM KCl, 1 mM CaCl2, 0.4 mM MgCl2, 25 mM PIPES, 5.6 mM glucose, 0.1% bovine serum albumin, pH 7.2)로 10분간 추가 배양하였다.
항알레르기 실험을 위해서 시험물질을 함유한 SFM으로 세포 배양액을 교환하여 2시간 배양하였다. 이후 10 μg/mL의 dinitrophenyl-human serum albumin(DNP-HSA)를 함유한 SFM으로 세포 배양액을 교환하여 2시간 동안 배양한 후 10분간 얼음에서 냉각시켜 반응을 종결하였다. 시료가 알레르겐(allergen)으로 작용하는지 알아보기 위해서는 DNP-HSA(항원) 대신 시료를 처리하였다.
세포 배양액을 수거하여 β-hexosaminidase 분비량 측정을 위해 35 μL 사용하고 남은 세포 배양액은 5,000 rpm에서 10분 동안 원심 분리하여 분리된 상층액을 -20°C에 보관한 후 cytokine 측정을 위한 시료로 사용하였다.
β-Hexosaminidase 분비량 측정 및 cytokine 측정을 위해 상층액을 수거한 후 남은 세포는 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide(MTT; Sigma-Aldrich Co., St Louis, MO, USA) 시약을 처리하여 세포 생존율을 확인하였다.
세포 생존율은 Chung 등(2020)의 방법과 유사하게 MTT (Sigma-Aldrich Co.) 환원 방법을 이용하여 측정하였다. 즉, 각 well에 MTT 용액(5 mg/mL)을 성장 배지의 10분의 1을 가해주고 다시 37°C에서 4시간 더 배양하여 MTT를 환원시켜 생성된 formazan이 배지에 따라 나가지 않도록 배지를 조심스럽게 제거하였다. 남아 있는 배지를 완전히 제거하기 위해 실온에서 30분간 방치한 후 dimethyl sulfoxide(DMSO; Sigma-Aldrich Co.)를 이용하여 용해한 시료를 570 nm에서 흡광도를 측정하였다. 흡광도 측정 시 공시료는 DMSO로 하였고, 세포의 생존율은 아래와 같이 계산하였다.
96-well plate에 상층액 35 μL와 substrate buffer(2 mM 4-p-nitrophenyl-N-acetyl-β-D-glucosaminide in 0.1 M sodium citrate, pH 4.5) 35 μL를 넣어 37°C에서 1시간 동안 반응시킨 후 stop solution(0.1 M Na2CO3/NaHCO3, pH 10.0) 200 μL를 첨가하여 반응을 종결하고, 405 nm 파장에서 흡광도를 측정하였다.
결과 및 고찰
꼬막 함유 혼합분말 개발에 사용할 꼬막 초절임 개발을 위해 먼저 혼합물과 초절임액을 개발하였다. 양파, 사과, 오이, 생강 그리고 브로콜리의 건조한 분말을 2:2:1:0.5:1 비율로 개발한 혼합물을 이용하여 초절임액을 개발하였고, 이들 초절임액의 기능 성분을 분석한 결과는 Fig. 1과 같다.
혼합물은 fisetin은 흔적량(trace), kaempferol은 2.1 μg/g extract, isoquercitrin은 23.1 μg/g extract 그리고 spiraeoside 함량은 31 μg/g extract이었다(Chung 등, 2020). 이들 혼합물을 이용하여 초절임액을 개발하였고, 이들 초절임액으로 꼬막 초절임을 개발하였다. 꼬막 초절임을 개발하는 과정에서 1차 초절임액과 2차 초절임액을 모아 함유된 플라보노이드를 분석한 결과, fisetin, kaempferol, isoquercitrin 그리고 spiraeoside 함량은 피크가 작게 보이지만, 함량 계산이 불가한 흔적량(trace) 검출되었다(Fig. 1). 꼬막 초절임의 꼬막에 함유된 fisetin, kaempferol, isoquercitrin 그리고 spiraeoside 함량도 흔적량(trace) 검출되었다(결과 미제시).
이는 식초에 의해 이들 물질이 모두 파괴되었을 것으로 추정된다. 따라서 혼합물에 의한 저감화 효과를 얻기 위해서는 본 연구에서와 같이 식초를 넣기 전에 혼합물에 침지하는 과정이 수행되어야 할 것으로 생각된다.
혼합물을 함유한 초절임액으로 제조한 꼬막 초절임으로부터 꼬막 초절임액(개발과정 중 1차 초절임액과 2차 초절임액을 합한 것)을 얻었다.
꼬막은 알레르겐(allergen), 즉 알레르기 항원으로 작용하여 알레르기를 유발할 수 있으므로 RBL-2H3 세포에 IgE(항체) 처리 후 꼬막 초절임 및 그것으로부터 얻은 꼬막 초절임액이 β-hexosaminidase 분비에 미치는 영향을 알아보았다(Fig. 2).
개발한 혼합물 함유 꼬막 초절임은 항원으로 작용하지 않았고, 혼합물 대신 물을 더한 대조군 꼬막 초절임은 저농도에서는 항원으로 작용하지 않았으나, 1,000 μg/mL 처리군에서는 대조군과 비교하여 β-hexosaminidase 분비량이 유의적으로 증가하였다(Fig. 2(A)).
꼬막 초절임의 제조공정에서 얻은 초절임액의 결과는, 대조군 꼬막 초절임액과 혼합물 함유 꼬막 초절임액 모두 무처리군인 대조군과 비교하여 유의적으로 β-hexosaminidase가 증가하였고, 특히 1,000 μg/mL 대조군 꼬막 초절임액 처리군은 혼합물 함유 꼬막 초절임액보다 유의적으로 β-hexosaminidase 분비량이 증가하였다(Fig. 2(B)). 이와 같은 결과는 꼬막에 있는 항원 중 수용성인 물질이 있어 꼬막으로부터 용출되었으나, 혼합물을 함유한 초절임액은 식초 없이 담가 둔 시간 동안 혼합물에 함유된 생리활성 물질이 이들 물질을 제거하였을 것으로 추정된다. 혼합물을 더하지 않은 대조군 꼬막 초절임액 저농도 처리군은 무처리군인 대조군보다 유의적으로 높게 β-hexosaminidase을 분비하였지만, 혼합물 함유 초절임액과 비교하여 유의적 차이가 없고, 식초 없이 자숙 꼬막만 담가 둔 물보다 β-hexosaminidase의 분비량이 감소되어(결과 미제시), 식초가 알레르기 유발 물질인 항원을 일부 불활성화 및 파괴할 수 있을 것으로 추정된다.
식품 알레르기는 음식물에 의해 일어나는 알레르기 반응으로 꼬막 등에 의해 일어날 수도 있다. 즉, 꼬막에 있는 단백질 등이 항원으로 인식한 IgE 항체가 비만세포에 결합하면 활성화된 비만세포가 히스타민 등을 방출해 염증 반응을 일으켜 알레르기 증상을 일으킨다(Fujinoki 등, 2006). 비만세포는 알레르기의 주 요인이 되는 면역세포로서, 비만세포라고 불리는 이유는 핵에 비해 세포질이 많고 세포질 내에 과립을 많이 갖고 있기 때문이다. 따라서 알레르기 비만세포 모델로 호염기 세포(basophils) RBL-2H3 세포가 많이 사용되고 있다(Chen 등 2012; Passante와 Frankish, 2009). 또한, 이들 비만세포가 활성화되었을 때 분비되는 히스타민 농도가 낮아 히스타민과 함께 분비되는 β-hexosaminidase 활성을 측정함으로써 탈과립 정도를 알 수 있다(Chung 등, 2011; Wendeler과 Sandhoff, 2009).
IgE-항원 복합체에 의해 감작된 RBL-2H3 세포에서 양파, 사과, 오이, 생강, 브로콜리 추출물은 무처리군인 대조군과 비교하여 농도 의존적으로 β-hexosaminidase 분비량이 감소하였고, 특히 양파와 생강 추출물 처리로 강하게 β-hexosaminidase 분비가 억제되었다(Chung 등, 2020). Fisetin, kaempferol, isoquercitrin 그리고 spiraeoside은 항알레르기 효과에 대한 보고가 있어(Chung 등, 2020; Hwang 등, 2018; Kim 등, 2015), 이들 물질들을 함유한 혼합물이 꼬막의 알레르기 저감화에 영향을 미쳤을 것으로 생각된다.
따라서 본 연구에서는 RBL-2H3 세포에 IgE를 처리한 세포 모델에서는 개발한 혼합물 함유 초절임 꼬막은 알레르겐으로 작용하지 않아, 알레르기를 저감화시키는 꼬막 함유 혼합분말 개발에 활용할 수 있다는 것을 확인하여 다음 개발을 진행하였다.
IgE-antigen 복합체로 유도된 RBL-2H3 세포에서 Table 1에 제시된 배합비를 가진 혼합분말(mixture powder containing ark shell, MP), 혼합분말4(MP4) 그리고 혼합분말5(MP5)의 물 추출물들인 MPCAS, MPCAS4와 MPCAS5을 각각 처리했을 때 β-hexosaminidase 분비능에 미치는 영향을 알아본 결과는 Fig. 3과 같다.
500 μg/mL MPCAS, 1,000 μg/mL MPCAS, 1,000 μg/mL MPCAS4, 500 μg/mL MPCAS5 그리고 1,000 μg/mL MPCAS5 처리군이 양성대조군(IgE+DNP-HSA)보다 유의적으로 β-hexosaminidase 분비능이 감소하였다(Fig. 3). 1,000 μg/mL 처리 농도에서 MPCAS가 MPCAS4와 MPCAS5보다 유의적으로 β-hexosaminidase 분비능을 감소시켰고(Fig. 3), 관능검사에서도 MPCAS가 가장 높은 점수를 받았으므로(결과 미제시) 최적 배합비를 가진 혼합분말은 MP를 선택하였다. 계속되는 실험에서는 MPCAS를 꼬막 함유 혼합분말의 물 추출물 동결건조 분말이라 하였고, MPCAS의 in vitro 항알레르기 및 알레르기 저감화 실험을 계속 진행하였다.
이들 MPCAS는 IgE-antigen 복합체로 유도된 RBL-2H3 세포에서 세포독성이 없었고, IgE 처리 RBL-2H3 세포에서도 세포독성이 없었다(Fig. 4).
계속되는 실험에 사용되는 꼬막 함유 혼합분말(mixture powder containing ark shell, MP)은 건조 초절임 꼬막과 함께 다양한 생리활성 물질을 가진 건조 과채류(단호박, 브로콜리, 양파, 시금치, 비트, 당근, 사과), 서류(고구마), 곡류(귀리, 보리, 현미, 찰흑미), 콩류(검정콩, 렌틸콩) 및 견과류(아몬드, 호박씨) 분말과 월계수 잎 물 추출물의 동결건조 분말의 혼합물이다.
이들 혼합물을 물 추출하여 동결건조한 MPCAS 처리가 IgE-antigen 복합체로 유도된 RBL-2H3 세포의 세포 생존율 및 β-hexosaminidase release에 대한 영향(Fig. 4(A)와 Fig. 3)을 알아보았다. 그리고 식품이 알레르겐(allergen)으로 작용하는지 알아보는 세포 모델인 IgE 처리 RBL-2H3 세포에서 MPCAS 처리에 의한 세포 생존율 및 β-hexosaminidase release에 대한 영향(Fig. 4(B)와 Fig. 5)을 알아보았다.
IgE-antigen 복합체로 유도된 알레르기 RBL-2H3 세포에서 MPCAS는 1,000 μg/mL 처리군에서 양성대조군보다 유의적으로 β-hexosaminidase 분비량이 감소하였다(Fig. 3). IgE 항체를 처리한 RBL-2H3 세포에서 MPCAS는 β-hexosaminidase 분비량이 무처리군인 대조군과 비교하여 차이가 없었으므로(Fig. 5) MPCAS는 항원으로 작용하지 않는다는 것을 알 수 있었다. 개발된 꼬막 함유 혼합분말은 항체인 IgE가 감작된 상태에서 항원으로 작용하지 않고, 항알레르기 효과가 있다는 것을 알 수 있었다.
꼬막 함유 혼합분말 추출물인 MPCAS를 IgE+DNP-HSA (항원) 복합체에 의해 유도된 알레르기 RBL-2H3 세포 모델에 처리한 결과, IL-4, IL-13 그리고 TNF-α는 250, 500 그리고 1,000 μg/mL MPCAS 처리군에서 양성대조군보다 유의적으로 감소하였다(Fig. 6(A), Fig. 7(A) 그리고 Fig. 8(A)). 따라서 MPCAS는 항알레르기 효과가 있다는 것을 알 수 있었다.
꼬막은 IgE-처리 RBL-2H3 세포에서 알레르겐(allergen)으로 작용하여 과량의 β-hexosaminidase, IL-4, IL-13 그리고 TNF-α를 분비한다(결과 미제시). 따라서 꼬막을 소량 함유하여도 알레르기를 유발할 수 있으므로 꼬막 함유 혼합분말 MPCAS가 알레르겐으로 작용하는지 알아보았다. IgE를 처리한 RBL-2H3 세포에 MPCAS를 처리한 결과, IL-4, IL-13 그리고 TNF-α 함량이 무처리군은 대조군과 유사하였다(Fig. 6(B), Fig. 7(B) 그리고 Fig. 8(B)). 이와 같은 결과들은 MPCAS에 함유한 꼬막 및 다른 혼합물도 알레르겐으로 작용하지 않는다는 것을 알 수 있었다.
항알레르기 효과가 있는 양파, 사과, 브로콜리, 검정콩 껍질(Chung 등, 2011; Chung 등, 2020) 등과 제품개발을 위한 영양과 맛을 고려하여 더한 식물 건조 분말의 혼합물들에 꼬막 건조 분말을 섞었을 때 이들 혼합분말은 항알레르기 효과를 가지고 있으면서 알레르겐으로 작용하지도 않아 알레르기 반응을 걱정하는 소비자들에게 알레르기 저감화 식품소재로 활용할 수 있을 것으로 기대된다.
