한국식품저장유통학회
[ Article ]
Korean Journal of Food Preservation - Vol. 26, No. 7, pp.766-776
ISSN: 1738-7248 (Print) 2287-7428 (Online)
Print publication date 30 Dec 2019
Received 24 Sep 2019 Revised 11 Oct 2019 Accepted 13 Nov 2019
DOI: https://doi.org/10.11002/kjfp.2019.26.7.766

초산균 종류에 따른 꾸지뽕 발효식초의 품질 특성

이수정 ; 김순희 ; 김소영 ; 여수환*
농촌진흥청 국립농업과학원 농식품자원부 발효가공식품과
Quality characteristics of Kujippong (Cudrania tricuspidata) vinegar fermented by various acetic acid bacteria
Su Jeong Lee ; Sun Hee Kim ; So Young Kim ; Soo-Hwan Yeo*
Fermented Processing Food Science Division, Department of Agrofood Resource, NAS, RDA, Wanju 55365

Correspondence to: * E-mail: yeobio@korea.kr Phone : 82-63-238-3609, Fax:82-63-238-3843


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Abstract

In this study was we investigated the optimum conditions for the fermentation of Kujippong (Cudrania tricuspidata) vinegar by various acetic acid bacteria (Acetobacter pasteurianus A26, A37, B7) and its quality characteristics. Fermentation at various initial acidities (pH 2, 3, and 4) and temperatures (20℃, 30℃, and 35℃) revealed that A. pasteurianus A37 and B7 produced the most acetic acid when fermented at pH 4 and 20℃. The acidities of the Kujippong fermented vinegars prepared with the A37 and B7 strains increased by 6.3% and 6.1%, to pH 2.45 and pH 2.43, respectively. Meanwhile, the vinegar produced by the A26 strain showed low acidity under all conditions. At the end of fermentation period, the acetic acid content of the main organic acid had increased by a factor of ten from day 0, to values of 37.34 mg/mL for A. pasteurianus A37 and 39.34 mg/mL for B7. The A37 and B7 strains produced 37.5% and 59.2% volatile components, respectively, which were mainly acetic acid and its ethyl ester, among a relatively diverse range of volatile compounds produced. Therefore, the good aceitc acid production of farm-made Kujippong-fermented vinegar is expected to promote the consumption of local agricultural products and and increase in farm income.

Keywords:

Kujippong, acetic acid bacteria, farm-made type, fermentation, vinegar

서 론

발효식품은 미생물의 분해 작용을 통해 식품의 풍미 및 저장성 향상, 식물 섬유소의 활성 증진 등 많은 장점을 가지고 있어 활용이 증가하고 있다(1,2). 그 중에서도 식초는 술과 함께 인류의 식생활에서 가장 오랜 역사를 갖는 발효식품 중의 하나로서, 동서양을 막론하는 대표적인 조미료로 이용되고 있다(3).

식초의 품질은 원료, 발효법, 제조방법 등에 따라 크게 달라지고, 초산 함량, 유기산 조성 및 맛에 영향을 주는 유리아미노산 조성 등도 이에 영향을 미친다(4). 이러한 식초는 고유의 식품 방부제 기능 이외에 젖산분해 촉진, 콜레스테롤 저하 및 체지방 감소 등의 기능성 효과가 있는 것으로 밝혀지면서(5) 조미료로서 뿐만 아니라 마시는 건강 음료로서도 다양하게 활용되고 있다.

꾸지뽕(Cudrania tricuspidata)은 뽕나무과에 속하며, 잎은 뽕잎 대용으로, 나무껍질과 뿌리는 약용이나 종이 원료로 쓰인다. 그 중 열매는 모양이 둥글고 취과로 지름이 2-3 cm인 육질로 9-10월에 붉게 익으며(6), 잼을 만들거나 술을 담그고 한방에서는 청열, 양혈 등의 효능이 있어 약재로 사용되기도 한다(7). 동의보감에서는 강장, 자양, 숙취해소 등의 특성이 있는 것으로 알려져 있다(8). 또한 항균 및 항염증 작용(9,10), 항당뇨(11), 항산화 작용(12) 등 생리활성에 대한 다양한 연구가 진행됨에 따라 전라도 지역을 중심으로 재배 면적이 확대되고 있다고 보고되어 있다(13).

그러나 대부분 꾸지뽕나무의 껍질과 잎에 대한 연구와 더불어 열매 중에서도 생리활성에 관한 연구가 보고되었으며(14-16), 이를 제외한 꾸지뽕 열매의 발효물질에 대한 연구 결과는 거의 없는 실정이다. 따라서 본 연구에서는 생리활성 효능이 우수하다고 알려진 꾸지뽕 열매를 이용한 농가형 발효식초 제조를 통해 농업자원의 가치를 향상시키고 정치발효에 따른 꾸지뽕 식초의 품질 특성을 규명함으로써 꾸지뽕의 산업적 활용 방안을 제시하고자 한다.


재료 및 방법

실험재료 및 전처리 방법

본 연구에 사용한 꾸지뽕(C. tricuspidata) 열매는 2017년 9월 경남 밀양의 농가에서 수확하여 냉동상태로 유통하는 것을 구입하여 사용하였다. 이를 유수에 세척하고 덩어리지지 않게 파쇄 한 후, 알코올 발효에 적합한 농도를 조절하기 위해, 총 원료의 180% (v/v)를 가수하였다. 가수한 착즙액을 설탕으로 보당(24 °Brix)한 후, 식용 ascorbic acid 0.2% (w/v)를 첨가하여 갈변을 억제하였다. 발효 초기에 착즙액의 잡균번식을 억제시키기 위해 80℃에서 1시간 동안 열처리하여 발효주 제조의 시료로 사용하였다.

사용균주 및 배지조성

꾸지뽕 발효주를 제조하기 위해 전통주제조에 주로 사용하는 송천효모(Saccharomyces cerevisiae)와 와인제조에 사용되는 수입산 건조효모(S. cerevisiae Fermivin)를 이용하여 알코올 발효시킨 결과, 알코올 생성능이 우수한 송천효모를 사용하였다(17). 공시균주인 송천효모를 30℃, 72시간 진탕배양(180 rpm)하면서 대수 증식기의 건강한 효모 배양액을 주모로 사용하였다.

농가형 정치발효 꾸지뽕 식초를 제조하기 위해, 본 연구팀에서 농가 및 식품 관련 연구소로부터 제공받은 식초에서 산 생성능이 우수한 초산균 3종(A. pasteurianus A26(KACC 92205P), A37(KACC 92206P), B7(KACC 92207P))을 분리·선발하여 국립농업과학원 KACC에 등록한 후 사용하였다. 배지조성은 각각의 초산균 특성에 맞게 A. pasteurianus A26 균주는 GYC배지(0.5% yeast extract, 3% glucose, 1% acetic acid, 8% ethanol)를, A. pasteurianus A37과 B7은 초산균 배지(0.5% yeast extract, 0.5% glucose, 1% glycerin, 0.02% MgSO4·7H2O, 1% acetic acid, 8% ethanol)에서 30℃, 180 rpm으로 진탕 배양하여 종초 제조용 종균으로 사용하였다.

알코올 및 초산 발효조건

상기의 전처리 방법을 통해 제조한 꾸지뽕 착즙액에 송천효모 배양액 3% (v/v)을 접종하여 30℃, 180 rpm으로 72시간 진탕 배양하여 주모를 제조하였다. 동일한 전처리조건으로 제조한 꾸지뽕 착즙액의 3% (v/v)가 되게 주모를 넣은 후, 25℃, 9일간 알코올 발효를 하였다. 발효주를 증류수로 희석하여 알코올 8%로 제성한 후, 초산발효를 위한 꾸지뽕 발효주로 사용하였다.

선발한 3종류의 초산균(A. pasteurianus A26, A37, B7)을 이용한 종초 제조는 8%로 제성한 꾸지뽕 발효주에 각각의 최적배지에 배양한 초산균 배양액 10% (v/v)을 접종 후, 정치배양하면서 적정산도가 3-3.5%의 종초를 제조하였다.

꾸지뽕 발효식초의 최적조건을 확립하기 위하여 8%로 제성한 꾸지뽕 발효주에 식용 구연산 및 탄산칼슘을 이용하여 초기 산도(pH 2, 3, 4)로 조절한 후, 서로 다른 발효온도(20, 30, 35℃)에서 정치발효를 통한 꾸지뽕 발효식초의 최적 제조조건을 선발하고자 하였다. 따라서 각 초기 산도별 꾸지뽕 발효주에 종초를 각각 10% (v/v)씩 넣고 발효 온도별로 정치배양 하면서 6일 간격으로 30일간 품질 변화를 모니터링 하였다(Fig. 1).

Fig. 1.

Manufacturing process of farm-made type Kujippong vinegar.

pH 및 적정산도

pH는 시료 20 mL을 취하여 pH meter(Orion 420Å, Waltham, USA)를 이용하여 실온에서 측정하였다. 적정산도는 시료 1 mL를 채취한 뒤, 증류수 9 mL로 10배 희석하여 1% phenolphthalein solution을 2-3 방울 가하여 0.1 N NaOH용액으로 중화 적정한 후, 소비된 용액의 양을 acetic acid로 환산하여 %로 표시하였다.

색 도

색도는 10 mm 셀에 시료 10 mL를 채운 후, 색차계(UltraScan Pro, HunterLab, Virsinia, USA)를 이용하여 L(lightness), a(red value), 그리고 b(yellow value) 값으로 나타내었다.

유기산 함량

유기산 함량은 Beak 등(18)의 방법을 응용하여 분석하였다. 시료 10 mL를 취하여 0.2 μm membrane filter로 여과한 후, 유기산을 분석하였으며 분석 장비는 HPLC(LC-20A Prominence, Shimadzu Co., Tokyo, Japan)를 사용하고, 칼럼은 C18(250×4.6 mm id, S-5 μm, 12 nm; YMC, Kyoto, Japan)을 사용하였다. 용매로 꾸지뽕 발효주에 0.1% phosphoric acid, 식초에 0.1% formic acid를 사용하였으며, 유속은 0.6 mL/min, 주입량은 20 μL로 분석하였다.

유리 아미노산 함량

시료 5 mL를 0.45 μm membrane filter로 여과하여 분석에 사용하였으며, 아미노산 분석기는 Sykam의 S7130 amino acid reagent organizer, S5200 sample injector와 S2100 solvent delivery system을 사용하였다. 컬럼은 cation separation 컬럼 LCA K06/NA(250 mm×4.6 mm)을 사용하여 분석하였다. 이동상의 유속은 0.45 mL/min, ninhydrin은 0.4 mL/min로 분석하였다(19).

휘발성 향기성분

시료 3 mL를 headspace glass vial에 넣은 후, 내부표준물질로 지정한 2-methyl-1-phentanol을 주입하여 시료가 담긴 headspace용 vial을 35℃로 30분간 평형상태에 도달시킨 후, 5분간 SPME fiber(DVB/CAR/PDMS)를 노출시켜 휘발성 향기성분을 포집하여 200℃ GC/MS injector에서 5분간 탈착시켜 휘발성 향기성분을 분석하였다. 분석에 사용한 GC/MS는 GC-2010 Plus, GCMS-TQ 8030(Shimadzu, Tokyo, Japan)을 이용하였으며, 칼럼은 DB-WAX(30 mm×0.25 mm i.d., 0.25 μm film thickness, J&W, CA, USA)를 이용하였다. 승온 프로그램은 40℃에서 3분간 머무른 뒤, 5℃/min의 속도로 90℃까지 승온시키며, 19℃/min의 속도로 230℃까지 승온시킨 후, 5분간 유지하였다. 주입 온도는 250℃로 설정하였으며, 운반 기체는 He을 사용하였고 유속은 1.0 mL/min으로 하였다(20).

통계분석

시료 분석은 동일 실험을 3회 반복하여 실시하였으며, 실험군당 평균과 표준편차로 나타내었다. 유기산 및 휘발성 향기성분은 SAS(Statistical Analysis System 9.4, SAS Institute, INC., Cary, NC, USA) 통계 프로그램을 이용하여 Duncan’s multiple range test로 p값이 0.05 미만 수준에서 통계적 유의성을 검토하였다.


결과 및 고찰

정치발효로 제조한 꾸지뽕 발효식초의 pH 및 적정산도의 변화

꾸지뽕 열매를 이용하여 3종류의 초산균(A. pasteurianus A26, A37, B7)으로 제조한 초산 발효물의 발효기간 및 온도에 따른 pH 및 적정산도의 변화를 조사하여 Fig. 2에 나타내었다. 초기 산도를 pH 2, 3, 4로 조절하여 온도별(20, 30, 35℃)로 초산 발효시킨 결과, A. pasteurianus A26을 이용한 꾸지뽕 식초는 초산발효가 제대로 되지 않는 것으로 보아 추가적인 연구가 필요할 것으로 여겨진다.

Fig. 2.

Changes in pH and acidity during farm-made type Kujippong vinegar.●, pH, 20℃; ○, acidity, 20℃; ■, pH, 30℃; □, acidity, 30℃; ▲, pH, 35℃; △, acidity, 35℃. Data are presented as the mean for 3 independent experiments. Error bars indicate SD (p<0.05).

A37 초산균은 초기 pH를 높게 설정하고 발효온도가 낮을수록 꾸지뽕 발효식초의 적정산도가 높은 것을 알 수 있었다(Fig. 2). 초기 pH 4와 발효온도 20℃에서 발효 전(미초)의 pH 3.53, 산도가 0.5%였으나 발효 종료 시점(30일)에서 pH 2.45, 산도 6.3%로 발효 초기보다 산 생성능이 12.6배 높았다. A. pasteurianus B7 또한 동일조건(pH 4, 20℃)에서 발효 전의 pH 3.72, 산도 0.4%였으나 발효 종료 시 pH 2.43, 산도 6.1%로써 A37 초산균과 비슷한 수준의 산 생성능을 유지하였다. 그러나 A37과 B7 초산균은 초기 산도 pH 2에서는 온도에 따른 pH 변화가 거의 나타나지 않았다. 초기 pH 3에서는 20℃에서 A37 초산균의 산도는 발효 12일 이후 꾸준히 상승하여 발효종료 시점인 30일에는 산도 5.5%를 나타내었고, B7 초산균은 발효 18일 이후부터 상승하여 30일의 산도가 5.2%를 나타내었다.

Kim 등(21) 보고한 보리식초에서 초기 pH를 낮게 설정할수록 유도기가 길어져 발효가 제대로 일어나지 않는다고 보고하였다. 이러한 결과는 초기 산도를 pH 2로 조절한 모든 조건에서 발효가 진행되지 않아 본 연구 결과와 유사하였다. 따라서 본 연구에서 초기 pH 4, 20℃가 꾸지뽕 발효식초의 최적 발효조건으로 설정하였다.

정치발효로 제조한 꾸지뽕 발효식초의 색도의 변화

3종류 초산균으로 제조한 꾸지뽕 식초의 발효기간에 따른 색도 변화를 Table 1-3에 나타내었다. 초산균 종류와 발효기간에 따라 L(lightness) 값이 낮아지고 a(red)와 b(yellow) 값이 증가하는 경향을 나타내었다. 산 생성능이 우수한 A. pasteurianus A37과 B7 초산균은 pH 4, 20℃조건에서 L(lightness) 값이 각각 91.09와 91.46에서 87.58과 83.02로 발효가 진행될수록 명도(L)가 낮아졌다. 이와 반대로 A. pasteurianus A37 초산균의 a(red) 값은 발효 전 -1.64에서 발효 30일 종료 시점에 -0.96으로, b(yellow) 값이 11.10에서 16.09로 증가하였고 B7 초산균은 a(red) 값이 발효 전 -1.69에서 발효 종료 시 -0.54로, b(yellow) 값이 14.50에서 20.16으로 증가하였다. A26 초산균은 발효 전의 L(lightness) 값이 93±1, 발효 종료 시 92±1로 측정되었으며, a(red)와 b(yellow) 값 모두 큰 변화를 보이지 않았는데 이는 초산발효가 제대로 되지 않은 영향으로 보인다. Sung 등(22)의 연구한 사과식초와 감식초 제조 시 발효가 진행됨에 따라 a(red) 값이 점차 감소되며 b(yellow) 값이 증가한다는 보고와도 유사하였다. 또한 Jang 등(23), Jo 등(24), Kim 등(25)이 다양한 제조법으로 인한 색도 변화를 보고한 선행 연구에서도 제조된 식초 색상은 원료 및 발효 방법에 따른 차이에 기인한다고 알려져 있다.

Changes in color value of Kujippong vinegar using Acetobacter pasteurianus A26 during fermentation period

Changes in color value of Kujippong vinegar using Acetobacter pasteurianus A37 during fermentation period

Changes in color value of Kujippong vinegar using Acetobacter pasteurianus B7 during fermentation period

꾸지뽕 발효식초의 유기산 함량 변화

과일식초의 산미와 지미를 형성하는 초산(acetic acid)을 비롯한 유기산의 구성은 TCA 회로를 활성화하여 젖산분해 촉진 등의 기능성을 가진다고 보고되어 있다(26). 초기 산도(pH 2, 3, 4)와 발효온도(20, 30, 35℃)를 달리하여 제조한 꾸지뽕 발효식초의 이화학적 분석 결과를 바탕으로 발효능이 뛰어난 최적조건(pH 4와 20℃)에서 초산균 종류별로 꾸지뽕 발효식초를 제조한 후, 이들의 유기산 함량 변화를 분석한 결과, 발효기간이 경과함에 따라 유기산 함량이 경시적으로 증가하는 것을 확인할 수 있었다(Table 4).

The organic acid content according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions(Unit : mg/mL)

초산균 A37과 B7로 제조한 꾸지뽕 발효식초의 유기산 함량은 발효 초기인 0일과 비교한 결과, A37은 38.67 mg/mL, B7은 41.66 mg/mL로 약 10배 정도 증가하였다. A37과 B7 초산균으로 빚은 꾸지뽕 식초의 유기산 중에서도 acetic acid가 각각 37.34 mg/mL, 39.34 mg/mL로 가장 많은 함량을 나타낸 주요 유기산이었다. 이러한 결과는 Jeong 등(27)의 사과식초에서 46.02 mg/mL, Kim 등(28)의 매실식초에서 32.27 mg/mL 그리고 Ko(29)의 막걸리식초에 꾸지뽕 열매를 첨가하여 제조한 식초에서 39.02 mg/mL로 검출된 선행 연구 결과와 초산 함량 등이 비슷한 것으로 보아 꾸지뽕 열매가 식초제조의 원료로서 가능성을 짐작할 수 있었다.

다음으로 검출된 lactic acid는 식초제조를 위한 당질의 알코올 발효 초기 젖산균이 번식하여 생성된 것이라 판단하며(30), citric acid, succinic acid 순으로 나타났다. A26 초산균은 발효 종료 시 citric acid 4.64 mg/mL로 가장 높았는데, 이는 Lee와 Kim(31)의 꾸지뽕 열매의 유기산 함량을 분석한 결과, citric acid, succinic acid가 다량 검출되었다는 보고를 바탕으로 본 연구에서 원료로 사용한 꾸지뽕 열매 자체의 유기산 구성에 영향 또는 젖산발효가 진행된 것으로 여겨진다.

꾸지뽕 발효식초의 유리 아미노산 변화

식초의 유리 아미노산은 구성 성분에 따라 맛에 영향을 미친다고 알려져 있다(32). 3종류 초산균을 이용하여 발효기간별 제조한 꾸지뽕 식초의 유리아미노산 분석 결과를 Table 5에 나타내었다. 꾸지뽕 열매로 초산 발효물의 이화학적 특성 분석 결과를 바탕으로 최적의 발효조건(pH 4, 20℃)에서 각 균주별로 제조한 꾸지뽕 식초의 유리 아미노산 함량을 분석한 결과, 초산균 종류와 상관없이 공통적으로 β-aminoisobutyric acid, phosphoserine 등이 주요한 아미노산으로 검출되었다, A37 초산균으로 빚은 꾸지뽕 식초는 β-aminoisobutyric aicd(0.041 mg/mL), phosphoserine(0.012 mg/mL), lysine(0.007 mg/mL), cystine(0.004 mg/mL) 순으로, B7 초산균은 β-aminoisobutyric acid(0.078 mg/mL), phosphoserine(0.027 mg/mL), cystine(0.007 mg/mL) 순으로 분포되었으며, 산미를 온화하게 해주는 glutamic acid(0.005 mg/mL) 또한 확인되었다(33).

The free amino acid content according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions(Unit : mg/mL)

초산균 종류별 제조한 꾸지뽕 식초의 총 유리 아미노산 함량은 A. pasteurianus A26 초산균(0.195 mg/mL) > B7(0.132 mg/mL) > A37(0.078 mg/mL) 순으로 산 생성능이 우수한 균주가 비교적 낮은 함량을 나타내며 발효가 진행될수록 감소하였다. 이러한 결과는 원료에서 유래된 아미노산이 초산발효 중 자화되어 38-60%가 감소된다는 보고 결과와 유사한 경향을 나타내었다(34).

꾸지뽕 발효식초의 휘발성 향기성분 변화

일반적으로 식초의 향미는 원료, 발효방법, 숙성 등의 과정을 거치면서 발효 미생물의 작용으로 초산 이외의 acid, aldehyde, alcohol, ketone 및 ester류 화합물이 상호 복합적으로 작용하여 다양한 종류의 휘발성 성분이 생성된다(35). 3종류 초산균을 이용하여 최적 발효조건에서 발효기간별 제조한 꾸지뽕 식초의 휘발성 향기성분 분석 결과를 Table 6-8에 나타내었다.

The volatile compound according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions using Acetobacter pasteurianus A26(Unit : Area%)

The volatile compound according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions using Acetobacter pasteurianus A37(Unit : Area%)

The volatile compound according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions using Acetobacter pasteurianus B7(Unit : Area%)

최적 발효조건인 초기 산도 pH 4와 발효온도 20℃에서 제조한 꾸지뽕 식초 중 산도가 가장 높게 나타난 A37 초산균은 휘발성 성분이 12종 검출되어 사용한 3종류의 초산균 중 가장 다양한 성분을 가지고 있었다. 꾸지뽕 식초의 발효기간별 향기성분 중에서 산 생성능이 우수한 A. pasteurianus A37(6.3%)과 B7 초산균(6.1%)의 acetic acid, ethyl ester는 A37 초산균은 발효 18일에 72.07%를, B7 초산균에서 발효 30일에 37.53%로 가장 높게 나타났다. 이는 자극취를 나타내는 산미로서 초산균에 의해 생성되는 산화 생성물로 식초의 주된 휘발성 성분으로 나타났다(36,37). 식초는 원료의 고유 특성으로 인한 맛과 향기성분을 가지는 동시에 발효 및 숙성방법에 따라 향기성분의 차이가 나타난다(38). 따라서 본 연구에서 동일한 원료를 사용하였지만 검출된 휘발성분이 각각 다른 것은 사용한 초산균과 발효조건에 따른 차이로 볼 수 있었다.

초산 생성능이 낮은 A26 초산균의 휘발성 성분인 acetic acid, ethyl ester는 발효시간이 경과할수록 줄어들었고 상대적으로 ethanol은 24.1%(30일)로 가장 높게 나타났다. A. pasteurianus A37과 B7 초산균으로 제조한 꾸지뽕 발효식초는 acetic acid ethyl ester, 3-methyl-1-butanol(isoamyl alcohol), 2-hydroxy benzoic acid(salicylic acid), ethanol, decanal, 그리고 2-ethylhexanol 등의 다양한 휘발성분을 가지고 있어 발효식초의 풍미에 영향을 미친다.


요 약

본 연구에서는 3종류의 초산균(A26, A37, B7)에 따른 꾸지뽕 발효식초의 최적 제조조건과 품질 특성을 규명하고자 하였다. 따라서 초기 산도(pH 2, 3, 4)와 발효온도(20, 30, 35℃)를 달리하여 꾸지뽕 발효식초를 제조한 결과, A. pasteurianus A37과 B7 초산균 모두 pH 4, 20℃ 발효조건에서 초산 생성능이 우수하였다. 이들 식초의 pH 및 적정산도를 분석한 결과, 발효 종료 시(30일) A37 초산균은 pH 2.45, 산도 6.3%, B7 초산균은 pH 2.43, 산도 6.1%로 나타난 반면에 A26 초산균은 모든 시험구에서 초산 생성이 낮게 나타났다. 초산 생성능이 우수한 조건(pH 4, 20℃)에서 제조한 꾸지뽕 발효식초의 유기산을 분석한 결과, 발효 종료 시 0일차로부터 약 10배 정도 증가하였으며 주요 유기산인 acetic acid는 A37 초산균에서 37.34 mg/mL, 그리고 B7은 39.34 mg/mL로 나타났다. 휘발성 향기성분 변화를 조사한 결과, A. pasteurianus A37, B7 초산균에서 비교적 다양한 종류의 휘발성 성분을 가지는데 주요 휘발성 성분으로 acetic acid ethyl ester가 각 59.18%와 37.53% 함량을 가지고 있었다. 기능성이 뛰어난 국산 농·특산물의 소비 촉진을 위해, 꾸지뽕 열매를 이용한 농가형 발효식초의 현장 실용화로 농가 소득 증진에 기여하고자 한다.

Acknowledgments

이 논문은 농촌진흥청 농업과학기술개발사업(과제번호: PJ01258801)의 지원에 의해 이루어진 것이며, 연구비 지원에 감사드립니다.

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Fig. 1.

Fig. 1.
Manufacturing process of farm-made type Kujippong vinegar.

Fig. 2.

Fig. 2.
Changes in pH and acidity during farm-made type Kujippong vinegar.●, pH, 20℃; ○, acidity, 20℃; ■, pH, 30℃; □, acidity, 30℃; ▲, pH, 35℃; △, acidity, 35℃. Data are presented as the mean for 3 independent experiments. Error bars indicate SD (p<0.05).

Table 1.

Changes in color value of Kujippong vinegar using Acetobacter pasteurianus A26 during fermentation period

Color value2) Period (days) Treatment1)
pH 2 pH 3 pH 4
20℃ 30℃ 35℃ 20℃ 30℃ 35℃ 20℃ 30℃ 35℃
1)pH, initial acidity; ℃, fermentation temperature.
2)L, lightness; a, red; b, yellow.
3)Data values were expressed as mean±SD of triplicate determinations.
L 0 93.89±0.033) 93.89±0.03 93.89±0.03 93.87±0.06 93.87±0.06 93.87±0.06 93.21±0.05 93.21±0.05 93.21±0.05
6 94.19±0.01 94.19±0.02 93.89±0.05 93.86±0.07 93.15±0.03 92.43±0.03 93.70±0.04 93.11±0.01 92.16±0.04
12 93.96±0.01 94.28±0.01 93.73±0.07 93.80±0.01 92.28±0.02 92.45±0.03 93.78±0.03 91.27±0.09 92.07±0.02
18 94.37±0.01 93.62±0.05 73.07±0.01 83.77±0.01 92.82±0.01 92.61±0.02 93.62±0.01 92.37±0.07 92.53±0.04
24 94.22±0.02 93.47±0.05 92.61±0.02 93.64±0.03 92.85±0.03 92.41±0.02 93.21±0.02 92.44±0.04 91.96±0.05
30 94.16±0.03 93.38±0.01 92.38±0.03 93.35±0.02 92.89±0.03 92.30±0.01 92.49±0.01 92.50±0.04 91.88±0.04
a 0 -1.07±0.01 -1.07±0.01 -1.07±0.01 -1.54±0.02 -1.54±0.02 -1.54±0.02 -1.60±0.03 -1.60±0.03 -1.60±0.03
6 -1.32±0.02 -1.74±0.01 -1.93±0.05 -1.49±0.03 -1.45±0.04 -1.45±0.02 -1.70±0.02 -1.73±0.07 -1.67±0.02
12 -2.26±0.01 -1.54±0.02 -2.35±0.07 -1.49±0.03 -1.57±0.05 -1.81±0.02 -1.76±0.01 -1.62±0.05 -2.07±0.03
18 -1.76±0.01 -2.44±0.01 -2.52±0.04 -1.47±0.01 -1.87±0.01 -1.77±0.03 -1.73±0.01 -2.21±0.01 -1.96±0.01
24 -1.93±0.05 -2.28±0.03 -2.27±0.04 -1.46±0.01 -1.86±0.01 -1.75±0.01 -1.64±0.02 -2.21±0.03 -1.85±0.01
30 -1.99±0.05 -2.24±0.01 -2.24±0.01 -1.45±0.04 -1.80±0.01 -1.70±0.01 -1.54±0.01 -2.08±0.04 -1.78±0.03
b 0 8.58±0.05 8.58±0.05 8.58±0.05 9.17±0.07 9.17±0.07 9.17±0.07 9.83±0.01 9.83±0.01 9.83±0.01
6 8.10±0.01 9.64±0.04 10.81±0.01 9.11±0.05 10.78±0.05 12.59±0.06 9.67±0.02 11.62±0.03 13.82±0.01
12 12.10±0.05 8.65±0.03 12.66±0.02 9.45±0.02 14.09±0.06 13.65±0.01 10.21±0.03 17.28±0.02 15.28±0.01
18 9.39±0.05 14.07±0.02 16.28±0.01 10.11±0.03 13.30±0.07 13.68±0.01 11.33±0.03 15.92±0.03 14.78±0.04
24 10.58±0.04 14.44±0.03 17.37±0.01 10.87±0.03 13.42±0.03 14.54±0.01 12.78±0.07 16.06±0.01 15.85±0.06
30 10.94±0.03 14.70±0.01 18.02±0.02 11.89±0.01 13.19±0.01 14.81±0.02 14.76±0.08 15.54±0.06 16.20±0.05

Table 2.

Changes in color value of Kujippong vinegar using Acetobacter pasteurianus A37 during fermentation period

Color value2) Period (days) Treatment1)
pH 2 pH 3 pH 4
20℃ 30℃ 35℃ 20℃ 30℃ 35℃ 20℃ 30℃ 35℃
1)pH, initial acidity; ℃, fermentation temperature.
2)L, lightness; a, red; b, yellow.
3)Data values were expressed as mean±SD of triplicate determinations.
L 0 92.07±0.023) 92.07±0.02 92.07±0.02 92.09±0.01 92.09±0.01 92.09±0.01 91.09±0.01 91.09±0.01 91.09±0.01
6 93.33±0.05 93.03±0.01 92.89±0.01 92.69±0.01 91.81±0.01 91.59±0.02 92.47±0.04 82.44±0.02 90.89±0.02
12 93.59±0.01 93.23±0.01 93.04±0.02 92.29±0.01 91.77±0.03 91.44±0.03 91.80±0.03 91.61±0.01 90.72±0.03
18 93.94±0.04 93.23±0.05 92.98±0.01 86.12±0.04 91.29±0.07 91.62±0.03 88.37±0.01 91.78±0.08 91.08±0.05
24 93.97±0.04 93.54±0.04 92.93±0.01 82.33±0.03 91.34±0.01 91.65±0.04 88.97±0.03 87.56±0.03 90.83±0.01
30 93.77±0.01 93.57±0.01 93.02±0.04 81.59±0.02 90.97±0.05 92.00±0.02 87.58±0.01 90.21±0.03 90.38±0.04
a 0 -0.73±0.03 -0.73±0.03 -0.73±0.03 -1.55±0.02 -1.55±0.02 -1.55±0.02 -1.64±0.03 -1.64±0.03 -1.64±0.03
6 -0.81±0.04 -0.93±0.01 -1.01±0.03 -1.55±0.03 -1.53±0.05 -1.53±0.04 -1.76±0.07 -1.98±0.05 -1.70±0.06
12 -0.89±0.03 -1.01±0.03 -1.06±0.03 -1.54±0.03 -1.66±0.03 -1.80±0.03 -1.76±0.05 -1.91±0.05 -2.28±0.03
18 -0.98±0.01 -1.14±0.01 -1.18±0.03 -0.58±0.01 -1.64±0.03 -1.77±0.01 -1.21±0.03 -1.93±0.03 -2.14±0.01
24 -1.03±0.01 -1.22±0.03 -1.25±0.01 0.07±0.03 -1.61±0.01 -1.77±0.03 -1.34±0.03 -1.18±0.04 -2.08±0.03
30 -1.01±0.07 -1.27±0.04 -1.32±0.08 0.28±0.01 -1.57±0.03 -1.81±0.08 -0.98±0.03 -1.71±0.01 -1.93±0.01
b 0 8.30±0.05 8.30±0.05 8.30±0.05 10.66±0.03 10.66±0.03 10.66±0.03 11.10±0.01 11.10±0.01 11.10±0.01
6 6.62±0.01 7.80±0.06 8.49±0.05 10.39±0.01 11.83±0.02 12.97±0.04 11.21±0.04 13.08±0.04 16.54±0.02
12 6.79±0.03 8.26±0.01 9.09±0.07 10.95±0.01 13.18±0.01 15.31±0.01 12.12±0.01 15.35±0.01 19.32±0.01
18 6.95±0.04 8.30±0.01 9.62±0.04 14.71±0.06 14.57±0.03 14.71±0.01 14.64±0.02 16.38±0.01 18.52±0.03
24 7.14±0.01 8.60±0.03 10.11±0.03 16.76±0.02 14.98±0.02 15.29±0.03 14.65±0.03 19.21±0.05 19.13±0.01
30 7.20±0.01 8.77±0.08 10.49±0.04 17.43±0.08 16.67±0.06 15.56±0.03 16.09±0.01 19.92±0.02 19.34±0.05

Table 3.

Changes in color value of Kujippong vinegar using Acetobacter pasteurianus B7 during fermentation period

Color value2) Period (days) Treatment1)
pH 2 pH 3 pH 4
20℃ 30℃ 35℃ 20℃ 30℃ 35℃ 20℃ 30℃ 35℃
1)pH, initial acidity; ℃, fermentation temperature.
2)L, lightness; a, red; b, yellow.
3)Data values were expressed as mean±SD of triplicate determinations.
L 0 90.16±0.013) 90.16±0.01 90.16±0.01 90.28±0.01 90.28±0.01 90.28±0.01 91.46±0.03 91.46±0.03 91.46±0.03
6 92.35±0.03 92.60±0.07 92.61±0.02 92.70±0.01 90.81±0.06 88.87±0.02 89.74±0.05 90.15±0.01 90.77±0.09
12 93.49±0.03 93.47±0.05 93.19±0.06 92.65±0.01 68.38±0.06 86.04±0.02 83.77±0.01 66.78±0.03 85.18±0.02
18 94.08±0.08 94.00±0.01 93.45±0.05 91.83±0.03 68.16±0.03 87.41±0.05 72.89±0.03 75.52±0.06 86.52±0.01
24 94.34±0.03 94.21±0.03 93.56±0.06 67.88±0.01 75.30±0.03 88.30±0.01 82.91±0.01 81.51±0.01 85.66±0.05
30 94.61±0.01 94.54±0.04 93.98±0.03 65.34±0.03 78.25±0.01 88.98±0.05 83.02±0.02 85.30±0.03 86.72±0.03
a 0 -0.78±0.03 -0.78±0.03 -0.78±0.03 -1.34±0.02 -1.34±0.02 -1.34±0.02 -1.69±0.01 -1.69±0.01 -1.69±0.01
6 -0.93±0.05 -1.25±0.06 -1.41±0.04 -1.71±0.02 -1.65±0.08 -1.20±0.07 -1.33±0.02 -1.81±0.03 -2.08±0.02
12 -1.19±0.01 -1.76±0.05 -1.80±0.03 -1.74±0.04 2.43±0.04 -0.93±0.10 -0.59±0.01 2.53±0.05 -0.29±0.08
18 -1.31±0.01 -1.73±0.02 -1.75±0.03 -1.70±0.07 2.63±0.05 -2.08±0.03 1.41±0.01 1.07±0.03 -1.78±0.01
24 -1.46±0.01 -1.76±0.07 -1.83±0.03 2.54±0.03 1.60±0.03 -1.95±0.08 -0.42±0.02 -0.10±0.03 -1.27±0.06
30 -1.68±0.02 -1.75±0.01 -1.86±0.06 2.78±0.02 1.89±0.04 -1.88±0.01 -0.54±0.01 -0.36±0.01 -1.36±0.03
b 0 9.32±0.02 9.32±0.02 9.32±0.02 13.85±0.01 13.85±0.01 13.85±0.01 14.50±0.05 14.50±0.05 14.50±0.05
6 9.51±0.09 10.58±0.06 11.13±0.03 13.02±0.01 17.61±0.10 24.07±0.05 14.62±0.02 17.31±0.06 20.81±0.02
12 8.86±0.01 11.65±0.04 12.66±0.03 13.03±0.01 27.22±0.03 38.47±0.03 18.12±0.01 27.93±0.03 37.53±0.01
18 8.73±0.01 11.35±0.05 12.97±0.01 15.45±0.05 29.07±0.04 33.74±0.05 22.26±0.01 28.42±0.05 33.91±0.02
24 9.17±0.03 11.57±0.03 13.68±0.01 23.43±0.04 30.65±0.01 33.01±0.04 20.76±0.02 28.24±0.02 33.31±0.01
30 9.59±0.02 11.88±0.04 14.02±0.06 24.21±0.02 31.26±0.01 32.65±0.07 20.16±0.01 28.03±0.03 33.10±0.04

Table 4.

The organic acid content according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions(Unit : mg/mL)

Treatment1) Strain Period (days) Organic acid
Acetic acid Lactic acid Succinic acid Malic acid Citric acid Total
1)pH 4, initial acidity; 20℃, fermentation temperature.
2)Means±SD. Different letters in the same row are significantly different (p<0.05) by duncan’s multiple range test.
3)ND, not detected.
pH 4, 20℃ A26 0 2.37±0.21a2) 0.87±0.02ab 0.04±0.01a ND3) 4.41±0.03c 7.69±0.25
6 2.44±0.19a 0.83±0.02bc 0.04±0.01a ND 4.44±0.03c 7.76±0.25
12 2.48±0.29a 0.88±0.01a 0.04±0.01a ND 4.54±0.06b 7.93±0.36
18 2.52±0.19a 0.86±0.03ab 0.04±0.01a ND 4.54±0.04b 7.97±0.26
24 2.69±0.08a 0.87±0.02a 0.04±0.01a ND 4.59±0.04ab 8.19±0.13
30 2.63±0.23a 0.81±0.02c 0.05±0.01a ND 4.64±0.04a 8.12±0.29
A37 0 2.50±0.08d 0.94±0.03b 0.04±0.01a ND 0.17±0.08a 3.66±0.19
6 2.51±0.04d 0.87±0.06b 0.04±0.01a ND 0.17±0.05a 3.59±0.15
12 9.38±0.05c 1.10±0.07a 0.04±0.0.1a ND 0.17±0.02a 10.69±0.15
18 28.47±0.73b 1.11±0.02a 0.04±0.01a ND 0.20±0.01a 29.82±0.76
24 35.95±2.90a 1.09±0.05a 0.04±0.01a ND 0.20±0.01a 37.28±2.97
30 37.66±0.65a 1.03±0.05a 0.04±0.01a ND 0.20±0.03a 38.93±0.73
B7 0 2.36±0.19e 0.85±0.04d 0.04±0.01a ND 0.24±0.03a 3.49±0.26
6 2.41±0.17e 0.83±0.02d 0.04±0.01a ND 0.26±0.02a 3.54±0.21
12 9.78±0.09d 1.54±0.10c 0.04±0.01a ND 0.25±0.03a 11.61±0.23
18 23.73±2.00c 1.57±0.02bc 0.04±0.01a ND 0.26±0.01a 25.60±2.03
24 32.68±2.17b 1.68±0.12b 0.03±0.01a ND 0.27±0.01a 34.66±2.31
30 39.27±0.87a 2.03±0.05a 0.03±0.01a ND 0.27±0.02a 41.60±0.95

Table 5.

The free amino acid content according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions(Unit : mg/mL)

Treatment1)
Strain
Period (days)
pH 4, 20℃
A26 A37 B7
0 6 12 18 24 30 0 6 12 18 24 30 0 6 12 18 24 30
Amino acid
1)pH 4, initial acidity; 20℃, fermentation temperature.
2)ND, not detected.
Phosphoserine 0.011 0.012 0.018 0.013 0.015 0.015 0.014 0.014 0.015 0.014 0.012 0.012 0.024 0.021 0.020 0.027 0.018 0.027
Taurine 0.001 0.001 0.002 0.001 0.002 0.002 0.001 0.001 0.001 0.001 0.002 0.002 0.002 0.003 0.002 0.002 0.001 0.002
Aspartic acid 0.003 0.002 0.003 0.003 0.005 0.005 0.003 0.001 0.001 ND ND ND ND ND ND ND ND ND
Threonine 0.002 0.001 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.001 0.001 ND ND ND 0.007 0.006 ND ND ND ND
Serine 0.001 0.001 0.001 0.001 0.002 0.001 0.001 0.001 ND ND ND ND 0.004 0.004 ND ND ND ND
Asparagine 0.002 0.001 0.001 0.001 0.002 0.001 0.002 0.002 ND ND ND ND 0.002 0.002 ND ND ND ND
Glutamic acid 0.010 0.007 0.010 0.011 0.016 0.015 0.01 0.009 0.001 ND ND ND 0.021 0.022 0.019 0.009 0.004 0.005
Proline 0.019 0.014 0.017 0.016 0.024 0.021 0.017 0.014 0.002 0.001 0.001 0.001 0.127 0.128 0.023 ND ND ND
Glycine 0.002 0.002 0.002 0.002 0.003 0.002 0.002 0.002 ND 0.001 0.001 ND 0.005 0.005 ND ND ND ND
Alanine 0.010 0.007 0.009 0.008 0.012 0.010 0.010 0.008 ND 0.004 0.003 ND 0.021 0.022 0.001 ND ND ND
Valine 0.002 0.002 0.002 0.002 0.003 0.002 0.002 0.002 0.002 ND ND 0.001 0.006 0.007 0.002 0.001 0.001 0.001
Cystine 0.006 0.004 0.004 0.003 0.004 0.003 0.007 0.005 0.005 ND ND 0.004 0.01 0.01 0.006 0.008 0.005 0.007
Methionine ND2) ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND
Isoleucine 0.005 0.003 0.004 0.004 0.006 0.005 0.004 0.003 0.002 0.001 0.001 0.001 0.010 0.010 0.005 0.004 0.002 0.003
Leucine 0.005 0.003 0.004 0.004 0.005 0.005 0.003 0.003 0.001 ND ND ND 0.011 0.011 0.004 0.002 0.001 0.001
Tyrosine 0.003 0.002 0.002 0.002 0.003 0.003 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.005 0.006 0.003 0.005 0.003 0.004
Phenylalanine 0.005 0.003 0.004 0.006 0.005 0.005 0.003 0.004 0.003 0.001 0.001 0.002 0.009 0.01 0.006 0.005 0.004 0.005
β-alanine ND ND ND ND ND ND 0.001 0.001 ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND
β-Aminoisobutyric acid 0.049 0.033 0.041 0.039 0.051 0.045 0.052 0.041 0.044 0.037 0.035 0.041 0.088 0.094 0.055 0.082 0.047 0.073
γ-Aminobutyric acid 0.014 0.009 0.013 0.012 0.017 0.015 0.017 0.014 ND ND ND 0.002 0.033 0.033 0.003 ND ND ND
Histidine 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.002 0.004 0.004 0.002 0.001 0.001 0.001
Ornithine 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.002 0.002 0.001 0.001 0.001 0.001
Lysine 0.021 0.016 0.018 0.017 0.023 0.021 0.020 0.017 0.014 0.01 0.01 0.007 0.033 0.032 0.008 0.005 0.003 0.002
Ammonia 0.001 0.001 0.001 0.001 0.002 0.002 ND ND ND ND ND ND 0.001 0.001 ND ND ND ND
Arginine 0.014 0.007 0.010 0.009 0.013 0.012 0.009 0.008 0.005 ND ND ND 0.019 0.019 ND ND ND ND
Total 0.189 0.134 0.171 0.16 0.218 0.195 0.185 0.156 0.102 0.075 0.071 0.078 0.444 0.452 0.16 0.152 0.091 0.132

Table 6.

The volatile compound according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions using Acetobacter pasteurianus A26(Unit : Area%)

Treatment1)
Period (days)
pH 4, 20℃
0 6 12 18 24 30
Compounds
1)pH 4, initial acidity; 20℃, fermentation temperature.
2)Means±SD. Different letters in the same row are significantly different (p<0.05) by duncan’s multiple range test.
3)ND, not detected.
Acetic acid ethyl ester 7.12±1.51c2) 7.10±1.11c 28.45±1.70ab 35.61±11.45a 24.99±1.97b 20.77±2.00b
1,1-Diethoxyethane 2.06±0.52a ND3) ND ND ND ND
Ethanol 31.34±0.86ab 35.66±1.52a 25.33±2.93bc 14.21±4.97d 21.59±3.71c 24.10±4.77c
Propyl acetate ND ND ND ND ND ND
Isobutyl acetate ND ND ND ND ND ND
2-Methyl-1-propanol 1.73±0.13a 1.31±0.34b 1.02±0.22bc 0.59±0.18d 0.90±0.19cd 0.56±0.12d
3-Methyl butyl acetate ND ND ND ND ND ND
1-Butanol ND ND ND ND ND ND
3-Methyl-1-butanol 13.55±0.86a 12.87±2.87a 8.72±0.58b 5.23±1.02c 7.04±0.96bc 5.77±0.37bc
Octanal 0.28±0.03a 0.22±0.06ab 0.21±0.05ab 0.11±0.04b 0.24±0.04a 0.18±0.12ab
Nonanal 0.71±0.04a 0.81±0.16a 0.76±0.34a 0.39±0.21a 0.56±0.15a 0.59±0.28a
2-Ethylhexanol 2.33±0.26a 2.47±0.33a 1.99±0.14a 1.37±0.30b 2.05±0.16a 2.04±0.36a
Decanal 0.90±0.15a 2.16±0.45a 1.83±0.94a 0.98±0.47a 1.90±0.86a 1.61±0.96a
2-Hydroxy benzoic acid methyl ester 13.61±0.97a 7.38±0.87c 5.78±0.27cd 4.55±1.19d 9.93±1.28b 9.50±1.45b

Table 7.

The volatile compound according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions using Acetobacter pasteurianus A37(Unit : Area%)

Treatment1)
Period (days)
pH 4, 20℃
0 6 12 18 24 30
Compounds
1)pH 4, initial acidity; 20℃, fermentation temperature.
2)Means±SD. Different letters in the same row are significantly different (p<0.05) by duncan’s multiple range test.
3)ND, not detected.
Acetic acid ethyl ester 16.03±0.88c2) 11.70±0.45c 59.37±1.94b 72.07±4.74a 67.54±3.04a 59.18±2.60b
1,1-Diethoxyethane ND3) ND ND ND ND ND
Ethanol 26.86±0.44a 27.53±3.25a 12.53±1.21b 3.88±0.16c 2.29±0.19c 1.47±0.13c
Propyl acetate ND ND 0.18±0.02b 0.31±0.08a 0.31±0.04a 0.29±0.02a
Isobutyl acetate ND ND 0.27±0.06b 1.07±0.20a 1.00±0.29a 0.84±0.11a
2-Methyl-1-propanol 1.40±0.05a 1.48±0.14a 0.75±0.08b 0.48±0.03c 0.64±0.06b 0.63±0.06b
3-Methyl butyl acetate ND ND 0.73±0.29b 2.79±0.68a 2.43±1.12a 2.27±0.39a
1-Butanol ND ND ND ND ND ND
3-Methyl-1-butanol 10.32±0.04a 10.70±1.08a 5.94±0.53b 3.84±0.20d 5.51±0.41bc 4.75±0.47cd
Octanal 0.33±0.01b 0.86±0.06a 0.23±0.05c 0.13±0.02d 0.13±0.00d 0.27±0.02bc
Nonanal 0.76±0.05b 1.55±0.20a 0.50±0.13c 0.34±0.04cd 0.25±0.03d 0.55±0.14bc
2-Ethylhexanol 1.84±0.09b 2.38±0.33a 1.17±0.05c 0.84±0.06d 0.98±0.08cd 1.27±0.22c
Decanal 1.74±0.01b 2.67±0.26a 0.90±0.23c 0.65±0.28c 0.50±0.05c 1.43±0.37b
2-Hydroxy benzoic acid methyl ester 11.87±0.27a 1.96±0.24bc 2.68±0.42bc 2.82±1.71bc 3.27±0.14b 1.58±0.21c

Table 8.

The volatile compound according to fermentation period of Kujippong vinegar by optimum conditions using Acetobacter pasteurianus B7(Unit : Area%)

Treatment1)
Period (days)
pH 4, 20℃
0 6 12 18 24 30
Compounds
1)pH 4, initial acidity; 20℃, fermentation temperature.
2)Means±SD. Different letters in the same row are significantly different (p<0.05) by duncan’s multiple range test.
3)ND, not detected.
Acetic acid ethyl ester 4.22±0.76e2) 1.89±0.22e 7.99±2.59d 22.60±0.93c 28.18±3.92b 37.53±1.31a
1,1-Diethoxyethane 1.98±0.51a 0.76±0.20b ND3) ND ND ND
Ethanol 32.41±5.43a 10.17±8.52b 27.96±2.89a 15.56±3.19b 10.66±0.77b 9.37±0.97b
Propyl acetate ND ND ND ND ND ND
Isobutyl acetate ND ND ND ND ND ND
2-Methyl-1-propanol 1.24±0.19a 0.75±0.10b 1.12±0.33ab 1.12±0.21ab 1.12±0.11ab 1.29±0.14a
3-Methyl butyl acetate ND ND ND ND ND ND
1-Butanol 0.17±0.04a 0.08±0.04a 0.16±0.04a 0.13±0.12a 0.11±0.02a 0.13±0.02a
3-Methyl-1-butanol 12.43±0.38a 7.47±1.87b 10.12±1.66a 11.68±1.18a 9.89±1.37a 11.52±1.06a
Octanal 0.32±0.24a 0.22±0.05a 0.26±0.11a 0.15±0.03a 0.13±0.06a 0.25±0.04a
Nonanal 0.85±0.55ab 0.67±0.14abc 0.55±0.24abc 0.42±0.11bc 0.25±0.05c 1.01±0.16a
2-Ethylhexanol 2.37±0.28ab 1.26±0.21c 1.66±0.29c 2.60±0.54a 1.79±0.44bc 2.31±0.04ab
Decanal 1.62±0.70a 0.85±0.20ab 1.04±0.63ab 0.60±0.22b 0.43±0.05b 1.24±0.41ab
2-Hydroxy benzoic acid methyl ester 6.16±2.38cd 3.99±0.36d 10.59±2.18b 15.84±0.90a 7.60±1.34c 6.82±0.23c